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Alexandre KRIZNIK

Equipe :
EpiRedOx
Bureau n° :
0B06
Site d'affectation :
Biopôle
Email :
alexandre.kriznik@univ-lorraine.fr
Téléphone :
03 72 74 65 56
Page LinkedIn :
https://www.linkedin.com/in/alexandre-kriznik-786b6376/

Statut

IR - UL

Thématiques de recherche

Ingénieur de recherche en biochimie et biophysique, je me spécialise depuis plus de 20 ans dans la production, la purification et l’étude structurale et fonctionnelle de protéines recombinantes, notamment à visée enzymologique et biotechnologique. Mes travaux portent sur la caractérisation fine d’enzymes redox telles que les peroxyrédoxines, en combinant biochimie analytique, biophysique (CD, ITC, DSC, DLS) et modélisation structurale. Je développe également des approches innovantes pour l’ingénierie des protéines et la valorisation de procédés enzymatiques, avec plusieurs brevets à la clé. Mon expertise couvre également la régulation redox, la signalisation cellulaire oxydative, et l’accompagnement de projets multidisciplinaires à l’interface biologie-physique-chimie.

As a research engineer in biochemistry and biophysics, I have over 20 years of experience in the production, purification, and structural-functional analysis of recombinant proteins, with a strong focus on enzymology and biotechnological applications. My research centers on the detailed characterization of redox enzymes, such as peroxiredoxins, using a multidisciplinary approach that combines analytical biochemistry, biophysical techniques (CD, ITC, DSC, DLS), and structural modeling. I also develop innovative strategies for protein engineering and enzymatic process valorization, resulting in several patented technologies. My expertise extends to redox regulation and oxidative cell signaling, with a proven track record in managing cross-disciplinary projects at the interface of biology, physics, and chemistry.

Responsabilités

Pilotage de la plateforme de Biophysique

Projets

Protéines redox et mécanismes enzymatiques

Étude approfondie du cycle catalytique et des états oxydés intermédiaires des peroxyrédoxines, sulfiredoxines et méthionine sulfoxyde réductases. Approche intégrée : enzymologie cinétique, modélisation structurale, analyses biophysiques (CD, ITC, DLS, DSC). Collaboration avec des équipes nationales et internationales (Toledano, Dietz, Messens…).

Développement de procédés innovants

pCARGHO : Affinité basée sur une activité lectine du domaine CRD des galectines – méthode alternative à faible coût pour la purification de protéines recombinantes.

Catsalyse : Protéines multimériques redox utilisées comme échafaudages modulables – applications en biocatalyse et nanostructuration.

Procédés enzymatiques pour l’agroalimentaire

3-MPST : Procédé enzymatique d’élimination des sulfites dans les boissons (vin, bière) et produits alimentaires.

Lactosafe : Détection et élimination des protéines lactosylées dans les concentrés protéiques laitiers – amélioration de la sécurité alimentaire et valorisation des coproduits laitiers.

Projets de formation et diffusion du savoir scientifique et technique :

Organisation et animation de workshops et formations sur la production et la caractérisation biophysique des protéines (notamment à l’international : Kuala Lumpur).

Formation continue des personnels techniques,ingénieurs et étudiants sur la plateforme de Biophysique.

Enseignements dispensés

Cours, travaux dirigés et travaux pratiques en bioproduction, purification et biophysique des protéines à l’IUT Nancy-Brabois et à la Faculté des Sciences de Nancy.

Publications